Стерилизация медицина

К химическим методам относят газовую стерилизацию и стерилизацию растворами антисептиков.

Газовая стерилизация

Газовую стерилизацию осуществляют в специальных герметичных камерах. Стерилизующими агентами служат пары формалина (на дно камеры кладут таблетки формальдегида) или окись этилена. Инструменты, уложенные на сетку, считают стерильными через 6-48 ч (в зависимости от компонентов газовой смеси и температуры в камере). Отличительная особенность метода — его минимальное отрицательное влияние на качество инструментария, поэтому способ используют прежде всего для стерилизации оптических, особо точных и дорогостоящих инструментов.

В настоящее время всё большее распространение находит способ стерилизации в озоново-воздушной камере. Она состоит из генератора озона и рабочей части, куда помещают стерилизуемые предметы. Активным агентом служит озон, который смешивается с воздухом. В камере поддерживают температуру 40 °С. Время стерилизации 90 мин. Преимущество этого метода состоит в его надёжности, быстроте, сохранении всех свойств обрабатываемых материалов и абсолютной экологической безопасности. В отличие от лучевой стерилизации, метод используют непосредственно в стационарах.

Стерилизация растворами антисептиков

Стерилизацию растворами химических антисептиков так же, как лучевую и газовую стерилизацию, относят к холодным способам стерилизации. Она не приводит к затуплению инструментов, в связи с чем её прежде всего применяют для обработки режущих хирургических инструментов.

Для стерилизации чаще используют 6% раствор перекиси водорода. При замачивании в перекиси водорода инструменты считаются стерильными через 6 ч.

Стерилизация хирургических инструментов

Обработка всех инструментов включает последовательное выполнение двух этапов: предстерилизационной обработки и собственно стерилизации. Способ стерилизации прежде всего зависит от вида инструментов.

Предстерилизационная подготовка

Предстерилизационная подготовка складывается из обеззараживания, мытья и высушивания. Ей подвергают все виды инструментов.

Вид и объём предстерилизационной обработки в недавнем прошлом зависел от степени инфицированности инструментов. Так, раньше существенно отличалась обработка инструментов после чистых операций (перевязок), гнойных операций, операций у больных, перенёсших гепатит и относимых к группе риска по СПИДу. Однако в настоящее время, учитывая высокую опасность распространения ВИЧ-инфекции, правила предстерилизационной подготовки ужесточены и приравнены к способам обработки инструментов, предусматривающим безусловную гарантию уничтожения ВИЧ. Следует отметить, что инструменты после гнойных операций, операций у больных, перенёсших в течение последних 5 лет гепатит, а также при риске ВИЧ-инфекции обрабатывают отдельно от других.

Все процедуры предстерилизационной обработки обязательно выполняют в перчатках!

Обеззараживание

Непосредственно после использования инструменты погружают в ёмкость с дезинфицирующими средствами (накопитель). При этом они должны быть полностью погружены в раствор. В качестве дезинфицирующих средств используют 3% раствор хлорамина (экспозиция 40- 60 мин) или 6% раствор перекиси водорода (экспозиция 90 мин). После обеззараживания инструменты промывают проточной водой.

Мытьё

Инструменты погружают в специальный моющий (щелочной) раствор, в его состав входят моющее средство (стиральный порошок), пероксид водорода и вода. Температура раствора 50-60 °С, экспозиция 20 мин. После замачивания инструменты моют щётками в том же растворе, а затем — в проточной воде.

Высушивание можно осуществлять естественным путём. В последнее время, особенно при последующей стерилизации горячим воздухом, инструменты сушат в сухожаровом шкафу при температуре 80 °С в течение 30 мин. После высушивания инструменты готовы к стерилизации.

Собственно стерилизация

Выбор метода стерилизации в первую очередь зависит от вида хирургических инструментов.

Все хирургические инструменты можно условно разделить на три группы:

• металлические (режущие и нережущие);

• резиновые и пластмассовые;

• оптические (рис. 2-7).

Рис. 2-7. Основные виды хирургических инструментов

Стерилизация нережущих металлических инструментов

Основной метод стерилизации нережущих металлических инструментов — стерилизация горячим воздухом в сухожаровом шкафу или автоклаве при стандартных режимах. Некоторые виды простых инструментов (пинцеты, зажимы, зонды и др.), предназначенные для одноразового использования, можно стерилизовать лучевым способом.

Стерилизация режущих металлических инструментов

Проведение стерилизации режущих инструментов с помощью термических методов приводит к их затуплению и потере необходимых свойств. Основной метод стерилизации режущих инструментов — холодный химический способ с применением растворов антисептиков.

Самыми лучшими способами стерилизации считают газовую стерилизацию (в озоново-воздушной камере) и лучевую стерилизацию в заводских условиях. Последний метод получил распространение при использовании одноразовых лезвий для скальпеля и хирургических игл (атравматический шовный материал).

Стерилизация резиновых и пластмассовых инструментов

Основной метод стерилизации резиновых изделий — автоклавирование. При многократной стерилизации резина теряет свои эластические свойства, трескается, что признано некоторым недостатком метода. Пластмассовые изделия разового использования, а также катетеры и зонды подвергают лучевой заводской стерилизации.

Особо следует сказать о стерилизации перчаток. В последнее время наиболее часто используют одноразовые перчатки, подвергшиеся лучевой заводской стерилизации. При многократном использовании основным методом стерилизации становится автоклавирование в щадящем режиме: после предстерилизационной обработки перчатки высушивают, пересыпают тальком (предупреждает слипание), заворачивают в марлю, укладывают в бикс. Автоклавируют при 1,1 атм в течение 30-40 мин, при 1,5 атм — 15-20 мин.

После надевания стерильных перчаток обычно их обрабатывают марлевым шариком со спиртом для снятия с поверхности талька или других веществ, препятствовавших слипанию резины.

В экстренных случаях для стерилизации перчаток возможен следующий приём: хирург надевает перчатки и в течение 5 мин обрабатывает их тампоном, смоченным 96% этиловым спиртом.

Стерилизация оптических инструментов

Основной метод стерилизации оптических инструментов, требующих щадящей обработки с исключением нагревания, — газовая стерилизация. Этим способом обрабатывают все инструменты для проведения лапароскопических и торакоскопических вмешательств, что связано со сложным их устройством.

При стерилизации фиброгастроскопов, холедохоскопов, колоноскопов возможно применение и холодной стерилизации с использованием химических антисептиков (хлоргексидина).

Следует особо отметить, что наилучшим способом профилактики контактной инфекции признано использование одноразового инструментария, подвергшегося лучевой заводской стерилизации!

Литература

1. Государственная фармакопея СССР. IX изд. М., 1961.- 912 с.

2. Государственная фармакопея СССР. Х изд. М., 1968.- 1080 с.

3. Дворецкий И.Х. Латинско-русский словарь: 4-е изд., стер.-М.: Рус.яз.,

1996- 846 с.

4. Синёв Д.Н., Гуревич И.Я. Пособие для фармацевтов аптек. — Л. Медици-

на, 1982. — 352 с.

Л.А.Поцелуева

АСЕПТИКА, СТЕРИЛЬНОСТЬ И АПИРОГЕННОСТЬ:

ОБЩНОСТЬ И РАЗЛИЧИЕ ПОНЯТИЙ

Казанский государственный медицинский университет, Россия;

Общим для асептики, стерильности и апирогенности является отсутствие микроорганизмов и всех производных составляющих. Асептика (асептические условия) — предупреждение попадания в (на) объект микроорганизмов.

Стерильность — отсутствие жизнеспособных бактерий. Процесс стерилизации в соответствующей аппаратуре, в первую очередь в автоклаве под давлением при температуре 119-121 °С на протяжении установленных Государственной фармакопеей (1) для разных объёмов стерилизуемых растворов промежутков времени, губительно действует на микроорганизмы, которые в последующем остаются в лекарственной форме, но уже в «умерщвлённом» (1) состоянии.

Апирогенность — отсутствие бактерий в любом состоянии (жизнеспособных и погибших), продуктов их распада и жизнедеятельности.

Название «пирогены» происходит от слов «pyr” (жар, огонь) и «generare ” (производить), что означает «вещества, рождающие жар». При парентеральном введении в организм пирогены могут вызывать очень тяжелые реакции, даже со смертельным исходом. Различают три степени пирогенной реакции — лёгкая, средняя и тяжёлая.

С химической точки зрения пирогены — липополисахариды (ЛПС), т.е. вещества небелковой природы, но адсорбированные на белковом носителе (2). Различают эндогенные (клеточно-тканевые продукты) и экзогенные пирогены (бактериального происхождения). В производстве лекарств имеют значение именно экзогенные пирогены, источником которых являются грамотрицатель-ные бактерии (аэробы) — носители эндотоксина, а также грибы и вирусы. Именно наличием эндотоксина определяется факт пирогенности объекта в присутствии не только самих микроорганизмов, но и их фрагментов.

Микроорганизмы могут загрязнять парентеральные лекарственные средства во время изготовления даже при соблюдении асептических условий и ис-

пользовании апирогенной воды, т.к. носителями пирогенов могут быть помимо самого растворителя и лекарственные вещества, а также посуда и т.д. Термостабильные лекарственные и вспомогательные вещества и посуда могут быть депирогенизированы при 170 °С в течение 2-х часов или при 250 °С в течение 30 мин.

Условием получения апирогенной воды являются конструктивные особенности дистиллятора, заключающиеся в предупреждении попадании капелек кипящей воды в дистиллят. Пирогенные вещества не могут переноситься паром, но легко перебрасываются в дистиллят вместе с каплями кипящей воды. Для их задержки используются либо отбойники, либо создаётся слой гранул (аппарат «Хирана»), механически задерживающих капли кипящей воды, но пропускающих пар через щели между ними.

Согласно фармакопейной статье на «воду для инъекций» (№42-2620-97), а именно она должна применяться при изготовлении парентеральных растворов, вода должна быть апирогенной и не содержать антимикробных веществ и других добавок.

Таким образом, в ряде случаев все участники технологического процесса (растворителъ, растворяемые лекарственные и вспомогательные вещества, посуда и т.д.), так или иначе, могут быть освобождены от пирогенных веществ. Однако в совокупности все эти процедуры трудоёмки и занимают много времени. В конечном итоге удорожается процесс производства лекарственных средств, что экономически не выгодно и для производителя и для потребителя.

Более рациональным является одномоментная депирогенизация уже готового раствора помощью ультрафильтрации через мембранные фильтры («мил-липор», «владипор» и др.), механически освобождающие лекарственную форму от частиц размером 1-50 нанометров. Возможно также использование для этой цели адсорбции с помощью углей, каолина, йонообменных смол и др. материалов.

Автоклавирование в режиме стерилизации в целом не уничтожает пиро-генность, хотя вероятно, в определённой степени снижает её, т.к. чувствительность различных микроорганизмов в одинаковых условиях может разниться.

Губительное воздействие на микроорганизмы оказывает автоклавирование растворов, имеющих кислую (рН < 4,0) или щелочную (рН >8,0)среду. Можно было бы предположить, что растворы новокаина, значение рН которых составляет 3,8-4,5 , должны при автоклавировании депирогенизироваться. Однако стерилизация любых растворов в автоклаве в зависимости от объёма раствора осуществляется на протяжении 8-15 минут (1), что, думается, явно недостаточно для уничтожения пирогенных веществ.

Эффективность депирогенизации объектов может быть обеспечена гам-ма-(у)-излучением. Основной недостаток данного вида стерилизации — недопустимо высокие дозы облучения. На ОАО «Татхимфармпрепараты» (г. Казань) указанным способом стерилизуют шовно-хирургические материалы

(шёлк, кетгут) на установке «Пинцет», находящейся в обособленно расположенном производственном корпусе.

Резюмируя вышеизложенное можно заключить, что стерильность не подразумевает апирогенность парентерального раствора, в то время как апироген-ность, характеризующая более высокий уровень очистки растворов, подразумевает стерильность.

Лицо, изготовившее раствор для парентерального введения, в частности, в производственной аптеке, оформляет паспорт письменного контроля (ППК), где факт факт асептического изготовления раствора констатируется в ППК надписью «Аверйсе”, что означает «приготовлено асептически», а факт осуществления стерилизации лекарственной формы отражается в виде надписи ‘^еь НваШш”, что означает «простерилизовано», в отличие от надписи в самом рецепте — ‘^егШвеШг” («должно быть простерилизовано»).

Литература

1. Государственная фармакопея СССР: Вып.2 . Общие методы анализа. /МЗ СССР. — 11-е изд., доп. — М.: Медицина, 1989. — 400 с.

iНе можете найти то, что вам нужно? Попробуйте сервис подбора литературы.

Т.Д. Синева

АКТУАЛЬНЫЕ ПРОБЛЕМЫ ПЕДИАТРИИ: ОСОБЕННОСТИ ПРИМЕНЕНИЯ

ЛЕКАРСТВЕННЫХ ПРЕПАРАТОВ В ПЕДИАТРИЧЕСКОЙ ПРАКТИКЕ

Санкт-Петербургская государственная химико-фармацевтическая академия,

Россия, ТР-8теуа@уапёех.щ

Основными требованиями, предъявляемыми к лекарственным препаратам, являются качество, эффективность и безопасность, что особенно актуально для препаратов, применяемых детям.

Особенности фармакотерапии в педиатрии обусловлены морфологическими и функциональными отличиями различных органов и систем растущего организма, а также возрастными различиями фармакокинетики и фармакодинамики. Фармакологическая безопасность лекарственных препаратов, предназначенных для детей, требует особого внимания. В связи с этим, в 2007 году ВОЗ выпустила первый Примерный перечень основных лекарственных средств для детей. А Европейский парламент одобрил закон, направленный на поддержку производителей лекарственных препаратов для детей. Этот закон обязывает фирмы, производящие препараты для взрослых, проверять возможность их использования в педиатрической практике.

Однако, по данным ВОЗ, более 10% госпитализаций детей связано с ос-

Главная / Информация / Статьи / Стерилизация. Методы стерилизации инструментов и медицинских изделий

Стерилизация — метод, обеспечивающий гибель в стерилизуемом материале вегетативных и споровых форм патогенных и непатогенных микроорганизмов.

Этапы стерилизации:

1. дезинфекция;
2. предстерилизационная очистка (ПСО);
3. стерилизация.

Методы стерилизации:

• термические (паровой, воздушный, глассперленовый);
• химические (газовый, растворы химических соединений);
• радиационный;
• плазменный и озоновый (группа хим. средств)

В условиях клиники наиболее распространенными методами стерилизации инструментов и медицинских зделий являются:

• паровой (автоклавирование),
• воздушный (сухожаровой шкаф),
• химический ( газовый, р-рами хим. соединений).

Стерилизацию следует осуществлять в строгом соответствии с предусмотренным режимом, удостовериться, что указанный режим реализован (прямой и непрямой контроль стерильности), а в последующем — руководствоваться сроками сохранения стерильности материала, изделий.

Стерилизация, паровой метод (автоклавирование). Надлежащая стерилизация в автоклаве возможна при строгом соблюдении правил подготовки биксов и их загрузки соответствующими изделиями, для чего следует:

• обработать внутреннюю поверхность бикса 70% спиртом и на его дно положить простыню с таким расчетом, чтобы затем ее концами накрыть содержимое бикса;
• заложить в бикс наборы резиновых изделий, перевязочного материала, белья;
• инструменты завернуть в полотенце или пеленку и заложить в бикс;
• после загрузки бикса разместить в нем 5 индикаторов: 4 — по внутренней стороне стенок бикса и 1 — в центре бикса (непрямой метод контроля стерильности);
• на крышке бикса зафиксировать бирку, на которой отметить: вид материала и лечебное отделение, для которого производится стерилизация инструментов и материалов;
• крышку бикса герметично закрыть. У бикса старого образца сдвинуть металлическую ленту-пояс и тем самым открыть окна на его стенках, которые после завершения стерилизации необходимо закрывать;
• после стерилизации на бирке бикса поставить дату и подпись медицинской сестры, проводящей автоклавирование.

Возможны различные варианты комплектации биксов: только один вид материала, наборы для типичного или конкретного оперативного вмешательства.

Стерилизация, воздушный метод. Надежная стерилизация инструментов возможна при правильном пользовании крафт-пакетами и рациональной укладке изделий в сухожаровом шкафу, для чего следует:

• в крафт-пакет заложить инструменты, прошедшие дезинфекцию и ПСО;
• крафт-пакет заклеить по его верхней кромке, либо фиксировать скрепками;
• на крафт-пакете указать содержимое, дату стерилизации и поставить подпись медицинской сестры, проводящей стерилизацию;
• все изделия можно разложить в один ряд на металлической сетке (многоразовые стеклянные шприцы — в разобранном виде);
• на сетку стерилизатора положить 5 индикаторов: 4 — по углам сетки и 1 — в центре (непрямой метод контроля).

Стерилизация, химический метод. Осуществляется в стерильных условиях. Помещение для стерилизации должно быть оснащено вытяжным шкафом, бактерицидным облучателем. Медсестра работает в стерильной спецодежде, перчатках, респираторе.

В стерильную емкость со стерилизантом погружаются изделия медицинского назначения, прошедшие дезобработку и ПСО, плотно закрывают крышку. В журнале отмечается время начала стерилизации. По окончании стерилизации мед. изделия извлекаются из раствора стерильными пинцетами или корцангами, перекладываются в другую стерильную емкость со стерильной водой, промываются, просушиваются и выкладываются в бикс со стерильной пеленкой. Время окончания стерилизации также заносится в журнал стерилизации.

Срок хранения стерильных инструментов тот же. Контроль стерильности инструментов — прямой.

Стерильность материалов, изделий, сроки сохранения:

• закрытые биксы нового образца — 20 суток;
• при открытом биксе любого образца стерильность материалов, изделий сохраняется до 24 часов;
• крафт-пакеты, заклеенные — 20 суток;
• крафт пакеты на скрепках — 3 суток.

Купить стерилизатор

Основной метод стерилизации резиновых изделий – автоклавирование. При многократной стерилизации резина теряет свои эластические свойства, трескается, что признано некоторым недостатком метода. Пластмассовые изделия разового использования, а также катетеры и зонды подвергают лучевой заводской стерилизации. Особо следует сказать о стерилизации перчаток. В последнее время наиболее часто используют одноразовые перчатки, подвергшиеся лучевой заводской стерилизации. При многократном использовании основным методом стерилизации становится автоклавирование в щадящем режиме: после предстерилизационной обработки перчатки высушивают, пересыпают тальком (предупреждает слипание), заворачивают в марлю, укладывают в бикс. Автоклавируют при 1,1 атм. в течение 30 – 40 мин, при 1,5 атм. – 15 – 20 мин. После надевания стерильных перчаток обычно их обрабатывают марлевым шариком со спиртом для снятия с поверхности талька или других веществ, препятствовавших слипанию резины. В экстренных случаях для стерилизации перчаток возможен следующий приём: хирург надевает перчатки и в течение 5 мин обрабатывает их тампоном, смоченным 96% этиловым спиртом.

Стерилизация оптических инструментов.

Основной метод стерилизации оптических инструментов, требующих щадящей обработки с исключением нагревания, — газовая стерилизация. Этим способом обрабатывают все инструменты для проведения лапароскопических и торакоскопических вмешательств, что связано со сложным их устройством. При стерилизации фиброгастроскопов, холедохоскопов, колоноскопов возможно применение и холодной стерилизации с использованием химических антисептиков. Следует особо отметить, что наилучшим способом профилактики контактной инфекции признано использование одноразового инструментария, подвергшегося лучевой заводской стерилизации!

Стерилизация перевязочного материала и белья.

а) в автоклаве б) в термостате

в) в стерилизаторе г) в сухожаровом шкафу

13. Отработанный материал, зараженный ВИЧ-инфекцией, подлежит дезинфекции в растворе

а) 10% хлорамина б) 10% хлорной извести 2 часа

в) 3% хлорамина 60 мин. г) тройном

14. Срок использования моющего раствора с «Биолотом»

а) 72 часа б) 48 часов в) 24 часа г) однократно

15. Контроль стерильности перевязочного материала осуществляется путем

а) использования химических индикаторов

б) использования биологических индикаторов

в) посева на питательные среды

г) использования физических индикаторов

16. Наиболее надежный метод контроля стерилизации

а) механический б) химический

в) физический г) бактериологический

17. После проведения предстерилизационной очистки для промывания мединструментов используется вода

а) проточная б) кипяченая

в) дистиллированная г) дважды дестилированная

18. Фенолфталеиновая проба проводится для определения остатков

а) масляного раствора б) крови

в) моющего средства г) лекарственного средства

19. При стерилизации водяным паром перевязочного материала используется давление (в атм.)

а) 4 б) 3 в) 2 г) 1

20. Стерилизация в сухожаровом шкафу проводится при температуре (в ° С)

а) 180 б) 150 в) 120 г) 90

21. ЦСО — это

а) центральное специализированное отделение

б) централизованное стерилизационное отделение

в) централизованное специализированное отделение

г) централизованное стерильное отделение

22. В стерильном блоке ЦСО проводят

а) выгрузку стерильного материала

б) предстерилизационную очистку

в) упаковку биксов

г) упаковку крафт-пакетов

23. Длительность использования накрытого стерильного стола (в часах)

а) 24 б) 18 в) 12 г) 4-6

24. Время дезинфекции в 1% растворе Виркона гибких эндоскопов и изделий медицинского назначения из металла (в мин.)

а) 360 б) 60 в) 30 г) 10

Тест-контроль по теме «Стерилизация»

Вариант 2

1. Уничтожение в окружающей среде патогенных микроорганизмов называется

а) дератизацией б) дезинфекцией

в) стерилизацией г) дезинсекцией

2. Для приготовления 1 л моющего раствора при предстерилизационной обработке инструментария необходимо взять 3% раствор перекиси водорода (в мл)

а) 240 б) 210 в) 170 г) 120

3. Для стерилизации инструментов применяется перекись водорода

а) 6% б) 4% в) 3% г) 1%

4. Концентрация перекиси водорода для приготовления моющего раствора составляет

а) 5% б) 3% в) 1% г) 10%

5. Аппарат, применяемый для стерилизации перевязочного материала

а) термостат б) автоклав

в) сухожаровой шкаф г) стерилизатор

6. Номер приказа МЗ СССР, регламентирующий санэпидрежим ЛПУ по профилактике гепатита

а) 770 б) 720 в) 408 г) 288

7. Метод контроля стерильности

а) визуальный б) бактериологический

в) физический г) фармакологический

8. Время дезинфекции шприцев и игл одноразового использования в 3% растворе хлорамина (в мин.)

а) 120 б) 60 в) 45 г) 15

9. Экспозиция при дезинфекции 6% раствором перекиси водорода с 0,5% моющих средств предметов, с которыми соприкасался больной гепатитом или СПИДом (в мин.)

а) 60 б) 45 в) 30 г) 15

10. Для контроля температуры в воздушном стерилизаторе применяют

а) ИС-100 б) ИС-120

в) ИС-180 г) ИС-132

11. Режим стерилизации мединструментария многоразового использования в автоклаве

а) Т=100° С, давление 1,1 атм., время 120 мин.

б) Т=180° С, давление 2 атм., время 60 мин.

в) Т=140° С, давление 1 атм., время 45 мин.

г) Т=132° С, давление 2 атм., время 20 мин.

12. Щадящий режим стерилизации режущих мединструментов в воздушном стерилизаторе

а) Т= 160° С, время 150 мин. б) Т=132 ° С, время 60 мин.

в) Т=180° С, время 60 мин. г) Т=180 ° С, время 45 мин.

13. Хранить изделия медицинского назначения после стерилизации 6% раствором перекиси водорода необходимо в

а) плотно закрытой стерильной емкости

б) фурацилине в) спирте г) хлорамине

14. Наиболее надежный метод контроля стерилизации

а) механический б) химический

в) физический г) бактериологический

15. При положительной фенолфталеиновой пробе появляется окрашивание

а) сине-зеленое б) фиолетовое

в) розовое г) коричневое

16. Моющий раствор с использованием средства «Лотос» применяется

а) в течение суток до появления фиолетовой окраски, нагревается до 3 раз

б) в течение суток до появления фиолетовой окраски

в) в течение суток до появления розовой окраски, нагревается до 6 раз

г) до появления розовой окраски

17. Температура моющего раствора с «Биолотом»

а) 40-450 б) 25-300 в) 50-550 г) 60-650

18. Длительность сохранения мединструментария в мягкой бязевой упаковке в условиях стерильности (в часах)

а) 72 б) 48 в) 24 г) 12

19. В состав ЦСО входит

а) стерильный блок б) процедурный кабинет

в) изолятор г) кабинет врача

20. Упаковка материала для стерилизации проводится в ЦСО

а) приемной б) сортировочной

в) моечной г) упаковочной

21. Раствор для дезинфекции мединструментария по ОСТу 42-21-2-85

а) 3% раствор перекиси водорода б) 3% раствор хлорной извести

в) 2% раствор Виркона г) 1% раствор хлорамина

22. При паровой стерилизации в качестве упаковочного материала применяется

а) бумага обычная б) шелковая ткань

в) марля г) бязь

23. Время дезинфекции в 2% растворе Виркона изделий медицинского назначения из стекла, пластмассы и полимеров (в мин.)

а) 360 б) 60 в) 30 г) 10

24. Универсальная проба для проверки мединструментария на наличие скрытой крови называется

а) бензидиновой б) фенолфталеиновой

в) азопирамовой г) бензойной

Эталоны ответов к тестам

Часть 1

	Б		А
	Г		В
	В		А
	В		В
	В		Г
	Б		В
	А		Б
	Б Часть 2		Б

Вариант 1	Вариант 2
	Б		В		А		В
	В		Б		Б		Г
	Б		А		Б		А
	В		В		В		Г
	В		Г		Г		А
	В		В		В		Г
	В		Г		А		Г
	А		В		В		А
	В		В		В		Г
	Г		Б		А		В

Часть 3

Вариант 1	Вариант 2
	Б		Б		Б		А
	А		Г		В		Г
	В		В		А		В
	В		Г		Б		В
	Г		А		Б		А
	А		В		В		А
	Б		В		Б		А
	В		А		Б		Г
	Б		Б		А		В
	Г		А		В		Г
	Г		Г		Г		В
	Г		Г		А		В

Из за большого объема этот материал размещен на нескольких страницах: 1 2 3 4 5 6 7